monocle 分析之細胞聚類

安裝monocle 包

monocle 分析之數(shù)據(jù)導入

monocle 分析之細胞聚類

數(shù)據(jù)預處理降維、可視化

去批次效應后重新降維

monocle3可以分析大型、復雜的單細胞數(shù)據(jù)，可處理數(shù)百萬個細胞。monocle3主要更新了哪些功能？

1.一個更好的結(jié)構化工作流程來學習發(fā)展軌跡。

2.支持 UMAP 算法初始化軌跡推斷。

3.支持具有多個root的軌跡。

4.學習具有循環(huán)或收斂點的軌跡的方法(Ways to learn trajectories that have loops or points of convergence)。

5.利用“近似圖抽象”的思想，?動劃分細胞以學習不相交或平?軌跡的算法。

6.一種新的對軌跡依賴表達的基因的統(tǒng)計測試。這將替換舊的differalgenetest()函數(shù)和BEAM()。

7.3D界面可視化軌跡和基因表達。

安裝monocle3包

要求R > 3.6.1

1、安裝Bioconductor

1 if (!requireNamespace(“BiocManager”, quietly = TRUE))

2 install.packages(“BiocManager”)

3 BiocManager::install(version = “3.10”)

2、安裝依賴包

1 BiocManager::install(c(‘BiocGenerics’, ‘DelayedArray’, ‘DelayedMatrixStats’,

2 ‘limma’, ‘S4Vectors’, ‘SingleCellExperiment’,

3 ‘SummarizedExperiment’, ‘batchelor’, ‘Matrix.utils’))

3、安裝monocle3

1 install.packages(“devtools”)

2 devtools::install_github(‘cole-trapnell-lab/leidenbase’)

3 devtools::install_github(‘cole-trapnell-lab/monocle3’)

如果不能聯(lián)網(wǎng)下載，可以下載到本地然后本地安裝

1 library(devtools)

2 install_local(“D:/monocle3-0.2.2.tar.gz”)

monocle3分析之數(shù)據(jù)導入

1、從seurat對象生成 cell_data_set （CDS）對象

.expression_matrix , a numeric matrix of expression values, where rows are genes, and columns are cells

.cell_metadata , a data frame, where rows are cells, and columns are cell attributes (such as cell type, culture condition, day captured, etc.)

.gene_metadata , an data frame, where rows are features (e.g. genes), and columns are gene attributes, such as biotype, gc content, etc.

注：表達矩陣的?數(shù)必須與gene_metadata相同，表達矩陣的列必須與cell_metadata相同

1?library(monocle3)

2?sceObj?<-?readRDS(“/path/sce_test.Rds”)

3?expression?<-?GetAssayData(sceObj,?assay?=?‘RNA’,?slot?=?‘counts’)

4?cell_metadata?<-?sceObj@meta.data

5?gene_annotation?<-?data.frame(gene_short_name?=?rownames(expression))

6?rownames(gene_annotation)?<-?rownames(expression)

7?monocle_cds?<-?new_cell_data_set(expression,?cell_metadata?=?cell_metadata,?gene_metadata?=?gene_annotation)

2、直接從10X cellranger生成CDS對象

monocle_cds 注：也可以使? load_mm_data() 函數(shù)讀取 MatrixMarket 格式數(shù)據(jù)

monocle3分析之細胞聚類

我們使用monocle3對數(shù)據(jù)進行聚類分析。

數(shù)據(jù)預處理

使用 preprocess_cds 對數(shù)據(jù)進行normalize 以及 PCA 降維

monocle_cds?<-?preprocess_cds(monocle_cds,?num_dim?=?50)

注：可以使? plot_pc_variance_explained() 函數(shù)畫肘部圖，從中選擇合適的 PCs 數(shù)降維、可視化

1?monocle_cds?<-?reduce_dimension(monocle_cds,?preprocess_method?=?“PCA”)?#?默認使?UMAP

2?plot_cells(monocle_cds,?color_cells_by=”seurat_clusters”)?#?umap顯示原seurat?細胞聚類的結(jié)果
?plot_cells(monocle_cds, genes=c(“LTB”, “IL7R”)) # 顯示某幾個基因的表達

去批次效應后重新降維
檢查樣本間批次效應

plot_cells(monocle_cds, color_cells_by=”sample”, label_cell_groups=FALSE) # 檢查樣本間的批次效應
align_cds移除批次效應
1?#?align_cds()?tries?to?remove?batch?effects?using?mutual?nearest?neighbor?alignment
2?monocle_cds?<-?align_cds(monocle_cds,?num_dim?=?100,?alignment_group?=?“sample”)?#?去除批次效應,似乎不太好使
3?monocle_cds?<-?reduce_dimension(monocle_cds)
plot_cells(monocle_cds,?color_cells_by=”sample”,?label_cell_groups=FALSE)

細胞聚類
1?#?monocle3同樣可以指定resolution（默認NULL），但需要注意，resolution?設置??seurat?很多（例如當resolution=0.1時，出現(xiàn)?百個cluster）
2?monocle_cds?<-?cluster_cells(monocle_cds,?resolution?=?0.0001,?reduction_method?=?“umap”)
3?plot_cells(monocle_cds)

Marker 基因分析
使用 top_markers() 函數(shù)尋找cluster之間的marker基因。
1# 可以選擇 cluster 也可以選擇 partitions
2as.character(partitions(monocle_cds)) %>% unique
3 [1] “3” “2” “6” “11” “4” “7” “1” “5” “9” “10” “8”
4 as.character(clusters(monocle_cds)) %>% unique
5 [1] “8” “4” “10” “14” “19” “9” “15” “2” “7” “1” “6” “5” “13” “11”
“17”
6 [16] “3” “12” “18” “16”
7
8marker_test_res 9head(marker_test_res, n = 3)
10gene_id gene_short_name cell_group marker_score mean_expression 11 1 HES4 HES4 10 0.2511486 0.9178898
12 2 TNFRSF18 TNFRSF18 3 0.2701016 3.8953993
13 3 TNFRSF4 TNFRSF4 3 0.3305234 5.8852331
14 fraction_expressing specificity pseudo_R2 marker_test_p_value 15 1 0.6170213 0.4070340 0.3236830 4.873175e-105 16 2 0.7234243 0.3733654 0.2931210 9.156877e-159 17 3 0.7102540 0.4653594 0.3062058 5.322088e-166
18 marker_test_q_value 19 1 1.317746e-99
20 2 2.476093e-153
21 3 1.439135e-160
22marker_test_res 23top_specific_markers %
24filter(fraction_expressing >= 0.10) %>%
25group_by(cell_group) %>%
26top_n(1, pseudo_R2)
27top_specific_marker_ids % pull(gene_id))
28plot_genes_by_group(monocle_cds,
29top_specific_marker_ids,
30group_cells_by=”cluster”,
31ordering_type=”maximal_on_diag”,
max.size=3
1?#?將monocle3結(jié)果存到seurat對象中
2?colData(monocle_cds)$monocle3_partitions?<-?as.character(partitions(monocle_cds))
3?colData(monocle_cds)$monocle3_clusters?<-?as.character(clusters(monocle_cds))
4?sceObj@meta.data?<-?pData(monocle_cds)?%>%?as.data.frame

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