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什么是RT-qPCR?& RNA一站式解決方案

RT-qPCR包括三大步驟:RNA的提取與質量檢測、逆轉錄成cDNA、以及實時熒光定量PCR實驗。通過RT-qPCR實驗,可以合成cDNA探針、獲取目的基因、以及分析基因的轉錄水平。

RNA的提取與質量檢測

從細胞、組織等樣本中提取出RNA后,需要對提取的RNA的純度、濃度、以及完整性進行評估,質檢達標后才能進行后續(xù)的實驗。一般需要通過紫外分光光度法(Nanodrop儀器)檢測RNA的濃度和純度;Agilent 2100儀器分析RIN值檢測RNA的完整性;以及瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA是否有基因組污染和其他雜質污染。

1.RNA的濃度&純度檢測(吸光度法)

由于RNA具有共軛結構,可以吸收紫外光,故測定RNA溶液在260 nm的吸光度值,可計算出RNA的含量。其中純度高的RNA,A260/A280比值應在1.9~2.2之間,若比值>2.2,表明可能有異硫氰酸,若比值<1.9,表明有蛋白質、酚等污染;建議重新提取RNA。

2.RNA完整性檢測(Agilent 2100分析)

RIN值大小反映樣品的完整性,一般RIN值在5~10之間,數(shù)值越接近10表明RNA完整性越高,反之RIN越小完整性越差(特殊樣品需結合基線綜合評估)。Agilent 2100檢測不僅可以得到樣品RIN值,還可以得到樣品濃度以及28S/18S比值(原核生物是23S/16S)。

圖片

圖1:RNA完整性指標

3.基因組及其他雜質污染檢測(凝膠電泳)

真核生物RNA特有28S、18S、5S三條帶,進行瓊脂糖凝膠電泳分析時,28S條帶的亮度大概是18S條帶的兩倍或者以上,且無拖尾,說明RNA的完整性高、未被其他雜質污染。若出現(xiàn)其他條帶、或者條帶彌散拖尾,建議重新提取RNA。

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圖2:真核生物完整的 RNA 瓊脂糖凝膠電泳圖

總之,RNA提取的原則:

① 保證RNA一級結構的完整性;

② 不存在對酶存在抑制作用的有機溶劑,以及過高濃度的金屬離子污染;

③ 其他蛋白質、多糖和脂類污染;

④ 排除其他核酸分子(DNA、游離核苷酸等)污染。

產品名稱:植物RNA提取試劑盒?Biomarker Plant Total RNA Isolation Kit (Polysaccharides&Polyphenolics–rich)

目錄:?RK02004
規(guī)格:?50 RXN
產品特點:專門針對多糖多酚或高淀粉植物組織提取RNA
實驗數(shù)據(jù):RNA提取凝膠電泳圖
圖3:提取50 mg不同組織中的RNA。Lane 1:番茄果;Lane 2:南瓜葉;Lane 3:玉米根;Lane 4:南瓜莖;Lane 5:絲瓜花;Lane 6:水稻種子。
除此之外,百邁客公司還提供動物常量RNA提取試劑盒(目錄:RK02009
規(guī)格: 50 RXN,數(shù)據(jù)查看鏈接:https://mp.weixin.qq.com/s/HNp3yFve6AEi3wykngJLlg),可以從細胞、動物組織、幼蟲等樣本中提取純度高的RNA。
以及微量細胞組織RNA提取試劑盒(目錄:? RK02010 規(guī)格:? 50 RXN,數(shù)據(jù)查看鏈接:https://mp.weixin.qq.com/s/5IYa1MNpQA030OnH_OSeig),可以從~5 mg的細胞、組織樣本中,快速(20 min內)提取純度高的RNA。

逆轉錄

cDNA的合成是RT-PCR的重要環(huán)節(jié)。提取完組織或細胞中的總RNA后,以其中的mRNA作為模板,利用逆轉錄酶逆轉成第一鏈cDNA,構建cDNA文庫,并從中篩選特異的目的基因。該方法已成為基因工程技術中獲得目的基因的策略之一。

逆轉錄PCR重要參數(shù)

不同mRNA拷貝成cDNA的效率不同;因此,選擇合適的逆轉錄酶、二價陽離子、dNTP、引物的選擇等非常重要。具體參數(shù)如下:

1.逆轉錄酶

目前市場上有兩種不同的逆轉錄酶,一種來自純化的禽成髓細胞瘤病毒(AMV),由兩條肽鏈組成,具有聚合酶活性和很強的RNA酶H活性,它最適溫度是42?℃,最適pH 8.3。但是高水平的RNA酶H的活性既抑制cDNA產生也限制其長度。

另一種來源于鼠白血病病毒(Mo-MLV)的逆轉錄酶,是單肽鏈的,有RNA聚合酶活性和相對較弱的RNA酶H活性,最適溫度37?℃,最適pH 7.6,較弱的RNA酶H活性,可擴增2-3 kb的cDNA。

2.單價陽離子

離子條件基本上影響各種模板的轉錄效率。K+的轉錄產物比Na+較長。對于cDNA長度的最適K+濃度為140-150 mM。

3.二價陽離子

對于反轉錄酶活性來說,二價陽離子也是必需的。產生全長cDNA產物的最適濃度是6-10 mM。

4.dNTP

四種脫氧核苷三磷酸(dNTP)的濃度,對于有效合成cDNA是至關重要的。如果其中只有一種的濃度小于10-50?μM,cDNA的產量將明顯下降。常用的dNTP的濃度為200-500?μM。

5.引物的選擇

逆轉錄引物一般包含三種:oligo dT,Random Primer Mix和特異性引物??蛻艨梢愿鶕?jù)個人需求進行選擇。

注意事項?

1.cDNA第一鏈合成的反應液需要冰上配制。

2.高純度、完整性好的RNA對于RT-PCR檢測至關重要。

3.Oligo-dT引物對于大多數(shù)應用是常用的,因為它確保所有cDNA拷貝終止于mRNA的3′?末端并可獲得最高產量的全長cDNA。

產品名稱:BiomarkerScript Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit

目錄:?RK02002
規(guī)格:?100 RXN
產品特點:高反轉錄酶的活性、熱穩(wěn)定性強、可擴增長達10 kb的cDNA
實驗數(shù)據(jù):以cDNA為模板,進行PCR擴增的凝膠電泳圖

圖4:以1μl人肝癌細胞RNA為模板,用BiomarkerScript Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit進行逆轉錄,得到cDNA產物。再以100?ng cDNA為模板,用Biomarker HS 2× HF Master Mix進行PCR擴增,將得到的產物進行瓊脂糖凝膠電泳,結果所示:擴增條帶單一且產量高。

實時熒光定量PCR

熒光定量PCR(Real-time Quantitative PCR)是通過檢測DNA雙鏈結合的染料,是 SYBR? Green I對DNA擴增過程中的起始量進行定量監(jiān)測的技術手段。qPCR實驗結果包含擴增曲線和溶解曲線。

1.擴增曲線
1)正常的擴增曲線一般呈S型、有明顯的四個時期,Ct值在20-30之間,且復孔的Ct值盡量一致,相差不要超過0.5個Ct值(上限是1個Ct值);
2)?同一個基因在不同濃度的相同模板下擴增,其相差的Ct值為相差濃度倍數(shù)的2次方。
3)?另外陰性對照不能有擴增(40個循環(huán)以后出Ct值屬正常現(xiàn)象,也可算作沒有擴增)。

圖5:擴增曲線
2.溶解曲線
1)溶解曲線是為了驗證擴增產物特異性,一般是單峰,和模板的濃度無關。
2)一般SYBR法的目的基因在80~90?℃之間。
3)若出現(xiàn)其他峰,可能是引物二聚體導致需要優(yōu)化引物序列、引物加量等因素。

圖6:溶解曲線

注意事項

(1) 請確保引物的正確性和特異性。通常引物終濃度0.2 μM可以得到較好結果。反應性能較差時,可以在0.1~1.0 μM范圍內調整引物濃度。

(2) 擴增產物的長度建議選擇在70~200 bp范圍內。

(3) 梯度稀釋模板,并依次建立標準曲線。

(4) 建議20 μL反應體系中加入1 pg~100 ng的DNA為模板,并設計無模板對照(NTC)。

(5)?為確保實驗重復性,建議每個樣品和對照組設置3個復孔。

產品名稱:Biomarker?2× SYBR Green Fast qPCR Mix

目錄: ?RK02001
規(guī)格: ?500 RXN
產品特點:兼容性完美,全平臺通用;靈敏度高,可檢測低至10 pg的模板。
實驗數(shù)據(jù):qPCR擴增曲線

圖7:以1?μg不同物種的RNA為模板(紅色:人肝癌細胞;藍色:雞;黑色:斑馬魚;紫色:水稻種子;黃色:番茄果),用BiomarkerScript Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit進行逆轉錄,得到cDNA產物。再以100 ng不同物種的?cDNA為模板,用Biomarker?2×SYBR Green Fast qPCR Mix進行qPCR擴增。

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